介绍实验室缓冲液配置
在食品检验理化实验室里各种各样的缓冲液都需要自行配置，在我们日常的准备过程中都需要对缓冲液进行准备，缓冲液对我们日常的前处理有很大的影响，缓冲液配置也是食品检验中一种很重要的过程，以下是食品检验资格证培训小编总结的常用缓冲液配置方法，以供各位学员自行学习和配置。
苯酚/氯-仿/异戊醇 (25 : 24 : 1)
配制方法：1. 说明：从核酸样品中除去蛋白质时常常使用苯酚/氯-仿/异戊醇(25 : 24 : 1)。氯-仿可使蛋白质变性并有助于液相与有机相的分离，而异戊醇则有助于消除抽提过程中出现的气泡。2. 配制方法：将Tris-HCl平衡苯酚与等体积的氯-仿/异戊醇(24 : 1)混合均匀后，移入棕色玻璃瓶中4℃保存。
1 M Tris-HCl (pH7.4, 7.6, 8.0)
组份浓度：1 M Tris-HCl 配制量：1 L
配制方法：1. 称量121.1 g Tris置于1 L烧杯中。2. 加入约800 ml的去离子水，充分搅拌溶解。3. 按下表量加入浓盐酸调节所需要的pH值。4. 将溶液定容至1 L。5. 高温高压灭菌后，室温保存。
注意：应使溶液冷却至室温后再调定pH值，因为Tris溶液的pH值随温度的变化差异很大，温度每升高1℃，溶液的pH值大约降低0.03个单位。
Solution II(质粒提取用)
组份浓度：200mM NaOH，1%(W/V)SDS 配制量：500ml
配制方法：1.量取下列溶液，置于500ml烧杯中，10% SDS 50ml，2N NaOH 50ml2.加灭菌水定容至500ml，充分混匀3.室温保存，此溶液保存时间zui-好不要超过一个月，注意：SDS易产生气泡，不要剧烈搅拌
Solution III(质粒提取用)
组份浓度：3 M KOAc, 5 M CH3COOH 配制量：500 ml
配制方法：1. 称量下列试剂，置于500 ml烧杯中。KOAc 147g、CH3COOH57.5ml2. 加入300 ml去离子水后搅拌溶解。3. 加去离子水将溶液定容至500 ml。4. 高温高压灭菌后，4℃保存。
0.5 M EDTA(pH8.0)
组份浓度：0.5 M EDTA 配制量：1 L
配制方法：称取186.1 g Na2EDTA·2H2O，置于1 L烧杯中。2. 加入约800 ml的去离子水，充分搅拌。3. 用NaOH调节pH值至8.0(约20 g NaOH)。注意：pH值至8.0时，EDTA才能*溶解。4. 加去离子水将溶液定容至1 L。5. 适量分成小份后，高温高压灭菌。6. 室温保存。
3 M 醋酸钠(pH5.2)
组份浓度：3M 醋酸钠，配制量：100ml
配制方法：1.称量40.8g NaAc·3H2O置于100-200ml烧杯中，加入月40ml的去离子水搅拌溶解2.加入冰醋酸调节pH值至5.23.加去离子水将溶液定容至100ml4高温高压灭菌后，室温保存。
PBS Buffer
组份浓度：137 mM NaCl, 2.7 mM KCl, 10 mM Na2HPO4, 2 mM KH2PO4，配制量：1 L
配制方法：1. 称量下列试剂，置于1 L烧杯中。NaCl8g、KCl0.2g、Na2HPO41.42g、KH2PO40.27g2. 向烧杯中加入约800 ml的去离子水，充分搅拌溶解。3. 滴加浓盐酸将pH值调节至7.4，然后加入去离子水将溶液定容至1 L。4. 高温高压灭菌后，室温保存。注意：上述PBS Buffer中无二价阳离子，如需要，可在配方中补充1 mM CaCl2和0.5 mM MgCl2。
10×TE Buffer (pH7.4, 7.6, 8.0)
组份浓度：100 mM Tris-HCl, 10 mM EDTA 配制量：1 L
配制方法：1. 量取下列溶液，置于1 L烧杯中。1M Tris-HCl Buffer(PH7.4，7.6，8.0)100ml500mM EDTA(PH8.0)20ml2. 向烧杯中加入约800 ml的去离子水，均匀混合。3. 将溶液定容至1 L后，高温高压灭菌。4. 室温保存。
2 N NaOH
组份浓度：2 N NaOH 配制量：100 ml
配制方法：1. 量取80 ml去离子水置于100～200 ml塑料烧杯中(NaOH溶解过程中大量放热，有可能使玻璃烧杯炸裂)。2. 称取8 g NaOH小心地逐渐加入到烧杯中，边加边搅拌。3. 待NaOH*溶解后，用去离子水将溶液体积定容至100 ml。4. 将溶液转移至塑料容器中后，室温保存。
Solution I(质粒提取用)
组份浓度：25 mM Tris-HCl(pH8.0), 10 mM EDTA, 50 mM Glucose，配制量：1 L
配制方法：1. 量取下列溶液，置于1 L烧杯中。1M Tris-HCl(PH8.0)25ml，0.5M EDTA(PH8.0)20ml，20%Glucose(1.11M)45ml，dH2O910ml2. 高温高压灭菌后，4℃保存。3. 使用前每50 ml的Solution I中加入2 ml的RNase A(20 mg/ml)。
2.5 N HCl
组份浓度：2.5 N HCl 配制量：100 ml
配制方法：1. 在78.4 ml的去离子水中加入21.6 ml的浓盐酸(11.6 N)，均匀混合。2. 室温保存。
5 M NaCl
组份浓度：5 M NaCl 配制量：1 L
配制方法： 1. 称取292.2 g NaCl置于1 L烧杯中，加入约800 ml的去离子水后搅拌溶解。2. 加去离子水将溶液定容至1 L后，适量分成小份。3. 高温高压灭菌后，4℃保存。
20% (W/V) Glucose
组份浓度：20% (W/V) Glucose，配制量：100 ml
配制方法：1. 称取20 g Glucose置于100～200 ml烧杯中，加入约80 ml的去离子水后，搅拌溶解。2. 加去离子水将溶液定容至100 ml。3. 高温高压灭菌后，4℃保存。
10% (W/V) SDS
组份浓度：10% (W/V)SDS、配制量：100ml
配制方法：1.称量10g高纯度的SDS置于100-200ml烧杯中，加入约80ml的去离子水，68℃加入溶解2.滴加浓盐酸调节pH值至7.23.将溶液定容至100ml后，室温保存。
1 M DTT
组份浓度：1 M DTT 配制量：20 ml
配制方法：1. 称取3.09 g DTT，加入到50 ml塑料离心管内。2. 加20 ml的0.01 M NaOAc(pH5.2)，溶解后使用0.22 mm滤器过滤除菌。3. 适量分成小份后，-20℃保存。
10 mM ATP
组份浓度：10 mM ATP 配制量：20 ml
配制方法：1. 称取121 mg Na2ATP·3H2O，加入到50 ml塑料离心管内。2. 加20 ml的25 mM Tris-HCl(pH8.0)，搅拌溶解。3. 适量分成小份后，-20℃保存。
1.5 M Tris-HCl (pH8.8)
组份浓度：1.5 M Tris-HCl，配制量：1 L
配制方法：1. 称量181.7 g Tris置于1 L烧杯中。2. 加入约800 ml的去离子水，充分搅拌溶解。3. 用浓盐酸调节pH值至8.8。4. 将溶液定容至1 L。5. 高温高压灭菌后，室温保存。
注意：应使溶液冷却至室温后再调定pH值，因为Tris溶液的pH值随温度的变化差异很大，温度每升高1℃，溶液的pH值大约降低0.03个单位。
10 M 醋酸铵
组份浓度：10 M 醋酸铵、配制量：100 ml
配制方法：1. 称量77.1 g醋酸铵置于100～200 ml烧杯中，加入约30 ml的去离子水搅拌溶解。2. 加去离子水将溶液定容至100 ml。3. 使用0.22 mm滤膜过滤除菌。4. 密封瓶口于室温保存。注意：醋酸铵受热易分解，所以不能高温高压灭菌。
